Zakłady
Jednostki
- Jednostki
- Zakłady
O nas
Zakład Diagnostyki Hematologicznej i Genetyki
Szanowni Państwo,
Zakład Diagnostyki Hematologicznej został wyodrębniony w styczniu 2014 roku jako oddzielna struktura organizacyjna Szpitala Uniwersyteckiego i w jego skład wchodzą dotychczas funkcjonujące oddzielnie przy Klinice Hematologii, 4 specjalistyczne pracownie:
- Pracownia Badań Hematologicznych
- Pracownia Cytometrii Przepływowej
- Pracownia Cytogenetyczna
- Pracownia Diagnostyki Molekularnej.
W Zakładzie zatrudnieni są wysoko wykwalifikowani diagności laboratoryjni, specjaliści w dziedzinie laboratoryjnej hematologii medycznej oraz laboratoryjnej genetyki medycznej, wykonujący unikatowe, wysoce specjalistyczne badania dla pacjentów ze schorzeniami hematologicznymi zgodnie ze światowymi standardami i wytycznymi.
Zakład posiada również wysokospecjalistyczną aparaturę diagnostyczną pozwalającą na pracę na bardzo wysokim poziomie.
Najwyższą jakość i wiarygodność wykonywanych oznaczeń, przeprowadzanych zarówno dla pacjentów Szpitala Uniwersyteckiego jak i dla pacjentów innych polskich szpitali, a także pacjentów spoza granic Polski w ramach badań klinicznych, potwierdzają otrzymywane certyfikaty udziału w krajowych oraz międzynarodowych kontrolach jakości, a Pracownia Diagnostyki Molekularnej odpowiada za standaryzację oznaczeń molekularnych w przebiegu przewlekłej białaczki szpikowej w pozostałych Pracowniach Biologii Molekularnej w Polsce.
Dr Magdalena Zawada
Certyfikaty
Pracownia Badań Hematologicznych
Pracownia Cytometrii Przepływowej
Pracownia Cytogenetyczna
Pracownia Diagnostyki Molekularnej
Działalność
Zakład Diagnostyki Hematologicznej i Genetyki
Struktura:
Z dniem 1 stycznia 2014 r. na podstawie Zarządzenia Nr 513/2013 Dyrektora Szpitala Uniwersyteckiego w Krakowie powołano nową komórkę organizacyjną Zakład Diagnostyki Hematologicznej o następującej strukturze:
Pracownia Badań Hematologicznych
Zespół:
- mgr Katarzyna Bulińska - Kierownik Pracowni; diagnosta laboratoryjny; specjalista laboratoryjnej hematologii medycznej
- dr n. med. Teresa Iwaniec - diagnosta laboratoryjny, specjalista laboratoryjnej diagnostyki medycznej
- mgr Barbara Rusnaczenko - diagnosta laboratoryjny
- mgr Anita Starzec - diagnosta laboratoryjny, specjalista laboratoryjnej diagnostyki medycznej
- mgr Roksana Bryczek – diagnosta laboratoryjny
Pracownia Badań Hematologicznych prowadzi specjalistyczną diagnostykę hematologiczną dla pacjentów hospitalizowanych w Klinice Hematologii, w Ośrodku Przeszczepiania Szpiku Kostnego, w Poradni i Ośrodku Dziennego Leczenia jak również dla pacjentów spoza Szpitala Uniwersyteckiego. W pracowni zatrudnieni są diagności laboratoryjni z wieloletnim doświadczeniem oraz wiedzą z zakresu diagnostyki hematologicznej chorób układu krwiotwórczego, w tym białaczek, chłoniaków, zespołów mielodysplastycznych i nowotworów mieloproliferacyjnych. W pracowni diagnostyki hematologicznej wykonywane są badania morfologii krwi oraz z zakresu diagnostyki układu czerwonokrwinkowego, a także immunologiczne badania krwinek płytkowych oraz cytomorfologiczna ocena krwi obwodowej oraz szpiku kostnego wraz z barwieniem cytochemicznym i cytoenzymatycznym.
Pracownia prowadzi także badania na potrzeby banku tkanek Szpitala Uniwersyteckiego oraz Oddziału Przeszczepiania Szpiku - badania monitorujące pozyskiwanie komórek do przeszczepiania komórek hematopoetycznych oraz jakościową ocenę materiału przeszczepowego – testy klonogennych komórek hematopoetycznych szpiku kostnego, a także ocenę żywotności przeszczepianych komórek. Pracownia wyposażona jest w nowoczesną aparaturę niezbędną do wykonywania badań diagnostycznych.
Pracownia Cytometrii Przepływowej
Zespół:
- dr n. biol. Agnieszka Balana-Nowak - Kierownik Pracowni – diagnosta laboratoryjny; specjalista laboratoryjnej hematologii medycznej
- mgr Aleksandra Biedroń - diagnosta laboratoryjny
- mgr Katarzyna Folta - diagnosta laboratoryjny
- mgr Edyta Zdziłowska - diagnosta laboratoryjny; specjalista diagnostyki laboratoryjnej; specjalista laboratoryjnej hematologii medycznej
Od 1 stycznia 2014 podstawie Zarządzenia Nr 513/2013 Dyrektora Szpitala Uniwersyteckiego Pracownia Cytometrii Przepływowej stała się częścią Zakładu Diagnostyki Hematologicznej Szpitala Uniwersyteckiego w Krakowie.
Pracownia Cytometrii Przepływowej powstała w 1996 roku przy Oddziale Klinicznym Hematologii Szpitala Uniwersyteckiego w Krakowie, kiedy ze środków finansowych Fundacji Profilaktyki i Leczenia Chorób Krwi im. Prof. Juliana Aleksandrowicza zakupiony został pierwszy cytometr przepływowy FACS Calibur firmy Becton Dickinson.
W 2008 roku, w ramach „Narodowego programu zwalczania chorób nowotworowych” pracownia, jako jeden z 13 ośrodków referencyjnych w Polsce, otrzymała drugi, cyfrowy cytometr FACS Canto II firmy Becton Dickinson.
W Pracowni Cytometrii Przepływowej wykonuje się badania immunofenotypowe w przebiegu: chorób nowotworowych układu krwiotwórczego, występowania zaburzeń immunologicznych, jak również ocenę komórek macierzystych w krwi oraz w materiale przeszczepowym u pacjentów i dawców szpiku.
Nowoczesna cytometria przepływowa daje możliwość szybkiego, jakościowego i ilościowego pomiaru jednocześnie kilku parametrów łączących własności fizyczne komórek – względną wielkość i ziarnistość - z własnościami biologicznymi takimi jak żywotność czy aktywność enzymatyczna. Dodanie przeciwciał mono- i poliklonalnych sprzężonych z barwnikami fluorescencyjnymi umożliwia precyzyjny pomiar gęstości i rozmieszczenia antygenów powierzchniowych, i wewnątrzkomórkowych.
W hematologii immunofenotypową ocenę komórek szpiku, krwi obwodowej czy komórek węzłów chłonnych wykonuje się u wszystkich pacjentów z podejrzeniem : ostrej białaczki szpikowej i limfoblastycznej, chłoniaka nieziarniczego, kryzy blastycznej w przewlekłej białaczce szpikowej czy transformacji białaczkowej w zespole mielodysplastycznym. Zastosowanie cytometrii przepływowej w diagnostyce ww. zespołów hematologicznych pozwala na :
- rozpoznanie stadiów różnicowania się poszczególnych populacji komórek hematopoetycznych,
- analizę dojrzałości komórek w obrębie badanej populacji nowotworowej,
- ocenę ekspresji molekuł odpowiedzialnych za występowanie oporności wielolekowej,
- wykrywanie fenotypów aberrantnych (nietypowych), jak immunofenotyp asynchroniczny, niepełny czy ko-ekspresja antygenów z innych linii komórkowych,
- monitorowanie efektów terapii i potwierdzenie remisji choroby,
- wykrywanie i śledzenie choroby resztkowej,
- jakościową i ilościową oceną materiału przeszczepowego u pacjentów kwalifikowanych do transplantacji komórek macierzystych.
Badanie immunofenotypowe pomaga lekarzowi w postawieniu prawidłowej diagnozy, podjęciu decyzji o sposobie, kontynuowaniu lub uzupełnieniu leczenia u chorego, co z kolei ułatwia kwalifikacje pacjentów do wysokodawkowanej chemioterapii wspomaganej przeszczepieniem komórek hematopoetycznych.
Zespół pracowni ma doświadczenie w wykonywaniu badań immunofenotypowych od 1994 roku (1994-09.1996 współpraca z Polsko-Amerykańskim Instytutem Pediatrii w Krakowie). Od początku działalności własnej pracowni (1996) wykonano ok. 20 000 badań u pacjentów leczonych w Poradni Przyklinicznej i Klinice Hematologii w Krakowie oraz kierowanych z innych ośrodków Polski południowej. Wyżej wymienione badania umożliwiły rozpoznanie 992 ostrych białaczek ( w tym 581 AML , 169 ALL-B, 49 ALL-T, 14 białaczek bifenotypowych i 170 wtórnych – kryza CML, trans MDS), 1240 przewlekłych białaczek limfatycznych oraz 295 innych chłoniaków nieziarniczych.
Ponadto od 2010 roku, w ramach programu zdrowotnego –„Leczenie antyretrowirusowe osób żyjących z wirusem HIV w Polsce”, w Pracowni Cytometrii Przepływowej wykonuje się rocznie ok 1000 oznaczeń indeksu CD4/CD8 na potrzeby pacjentów Kliniki Chorób Zakaźnych i Poradni Niedoborów Odporności Szpitala Uniwersyteckiego w Krakowie.
Zespół Pracowni brał udział w wielu szkoleniach krajowych i zagranicznych, m.in. :
- staż w Central Cell Service, Imperial Cancer Research Fund w Londynie,
- fenotypowanie i genotypowanie komórek , met. fingerprintig
- staż w Zakładzie Chirurgii Transplantacyjnej PAN w Warszawie
- znakowanie antygenów w preparatach tkankowych i komórkowych
- staż w Centrum Naukowym f. Becton Dickinson, Alst, Belgia
- zastosowanie cytometrii przepływowej w hematologii praktycznej i doświadczalnej
- staż w Instytucie Immunologii i Terapii Doświedczalnej PAN we Wrocławiu
- ocena CD34 w materiale transplantacyjnym,
- zastosowanie met. elutriacji w przygotowaniu materiału transplantacyjnego do allo BMT
- Staż w Zakładzie Hematologii Doświadczalnej, Centrum Onkologii w Warszawie
- pobieranie, przygotowanie, ocena (CD34, MNC) i mrożenie krwi pępowinowej jako materiału transplantacyjnego.
- II Międzynarodowa Szkoła Cytometrii, Uniwersytet Jagielloński w Krakowie Wydział Biofizyki
- microskopia konfokalna i analiza obrazu metodą cytometri przepływowej
- III Międzynarodowa Szkoła Cytometrii, Uniwersytet Jagielloński w Krakowie, Wydział Biofizyki
- metody oceny apoptozy przy użyciu cytometri przepływowej, warsztaty praktyczne
- 5 Międzynarodowej Konferencji Towarzystwa Cytometrycznego, Rynia, Polska
- Warsztaty cytometryczne - nowe techniki cytometryczne
- Szkoła Cytometrii, Rynia, Polska
-Warsztaty cytometryczne - znakowanie i analiza cytokin w materiałach biologicznych
oraz czynny udział w licznych konferencjach i zjazdach, krajowych i zagranicznych, co zaowocowało 62 doniesieniami naukowymi, w tym : 43 – zagraniczne, 19 – w czasopismach polskich.
Zespół Pracowni uczestniczył także w licznych projektach badawczych, m.in.:
1. Współpraca z Katedrą i Kliniką Dermatologii oraz Zakładem Alergologii Przemysłowej CMUJ w Krakowie w zakresie badania aktywności bazofilii pod wpływem różnych alergenów z zastosowaniem Basotestu. Celem było diagnozowanie reakcji nadwrażliwości typu natychmiastowego w odpowiedzi na alergeny naturalne.
2. Współpraca z II Katedrą Chorób Wewnętrznych CMUJ w Krakowie w zakresie ilościowej i jakościowej oceny komórek macierzystych (CD34+/AC133+) wykorzystywanych w terapii pacjentów z zakrzepowo-zatorowym zapaleniem naczyń kończyn dolnych.
3. Współpraca z Kliniką Kardiologii i Kardiochirurgii Szpitala Jana Pawła II w Krakowie w zakresie oceny komórek macierzystych izolowanych ze szpiku u chorych po zawale mięśnia sercowego.
4. Współpraca z Katedrą Biochemii Lekarskiej CMUJ w Krakowie w zakresie oceny ilościowej i jakościowej integryn i metaloproteinaz jako markerów inwazyjnego fenotypu raka prostaty.
5. Współpraca z Katedrą Biochemi Klinicznej w projekcie DLARFID (Dietary Lipids as Risk Factor in Development Mechanistic Issue) prowadzonym w ramach Programu Ramowego EU.
7. Katedra i Klinika Hematologii – badania własne- Wpływ inhibitora farnezylowej transferazy na proliferację i apoptozę komórek przewlekłei i ostrej białaczki szpikowej oraz szpiczaka plazmocytowego
8. Katedra i Klinika Hematologii – badania własne- Ocena P-glikoproteiny jako markera oporności wielolekowej u pacjentów z ostrą białaczką szpikową. Badanie współwystępowania Pgp z antygenem CD34 i antygenami limfoidalnymi w AML i ich znaczenie kliniczne.
9. Katedra i Klinika Hematologii – badania własne- Jakościowa i ilościowa ocena immunofenotypowa hemopoetycznych komórek macierzystych i progenitorowych szpiku kostnego lub krwi obwodowej, stanowiących materiał transplantacyjny . Badanie ich zdolności proliferacyjnych , badanie rekonstytucji hematopoezy u chorych po autologicznej transplantacji szpiku, optymalizacja procedur przygotowania materiału przeszczepowego
Wyniki powyższych badań zostały przedstawione w naukowych doniesieniach zjazdowych lub w pracach oryginalnych.
W ramach działalności naukowo-badawczej i pod opieką zespołu Pracowni Cytometrii powstało 7 prac doktorskich oraz 6 prac magisterskich tematycznie związanych z diagnostyką immunofenotypową białaczek ostrych i przewlekłych, korelacją opisywanych immunofenotypów i częstością uzyskiwania remisji (fenotypy aberrantne, oporność wielolekowa) oraz oceną ilościową i jakościową komórek macierzystych użytych do auto- i allo-transplantacji, i ich wpływem na odbudowę hematologiczną u pacjentów po przeszczepie.
Zespół pracowni prowadzi zajęcia dydaktyczne z zakresu hematologii laboratoryjnej ze studentami Oddziału Analityki Medycznej Wydziału Farmaceutycznego CMUJ, zajęcia fakultatywne dla studentów IV i V roku OAM oraz zajęcia ze studentami studiów podyplomowych. W pracowni, prowadzone są także szkolenia dla zespołów innych polskich laboratoriów cytometrii przepływowej oraz dla diagnostów laboratoryjnych w ramach kursów specjalizacyjnych.
Pracownicy są od wielu lat członkami polskich towarzystw naukowych:
- Polskie Towarzystwo Hematologów i Transfuzjologów
- Polskie Towarzystwo Cytometrii Przepływowej
Pracownia Cytogenetyczna
Zespół:
- mgr Małgorzata Jakóbczyk - Kierownik Pracowni - diagnosta laboratoryjny; specjalista laboratoryjnej genetyki medycznej
- dr n. med. Anna Dyrka - diagnosta laboratoryjny, specjalista laboratoryjnej genetyki medycznej
- mgr Jolanta Komenda - diagnosta laboratoryjny, w trakcie specjalizacji z laboratoryjnej genetyki medycznej
- mgr Katarzyna Kamska - diagnosta laboratoryjny, w trakcie specjalizacji z laboratoryjnej genetyki medycznej
- mgr Magdalena Błądek - diagnosta laboratoryjny
- mgr Szymon Eliasz – diagnosta laboratoryjny
Pracownia Cytogenetyczna Kliniki Hematologii SU w Krakowie została utworzona w 1999 r. jako laboratorium diagnostyczne, zabezpieczające potrzeby Kliniki w zakresie badań cytogenetycznych. W pierwszym okresie działalności, wykonywano badania diagnostyczne głównie dla pacjentów Kliniki Hematolgii SU. Jednakże stały wzrost liczby zachorowań na choroby nowotworowe układu hematopoetycznego i rosnące znaczenie badań cytogenetycznych spowodowały zwiększone zapotrzebowania na te badania i konieczność poszerzania ich zakresu.
W chwili obecnej, Pracownia Cytogenetyczna Zakładu Diagnostyki Hematologicznej SU, jest placówką wykonującą badania genetyczne z zakresu hematoonkologii osób dorosłych dla pacjentów z terenu Polski południowo-wschodniej.
Badania wykonywane w Pracowni obejmują swym zakresem zarówno aspekt diagnostyczno-rokowniczy jak też ocenę efektywności leczenia, również u pacjentów poddanych transplantacji szpiku kostnego. Analiza cytogenetyczna prowadzona jest metodami cytogenetyki klasycznej z zastosowaniem techniki prążków GTG oraz techniką cytogenetyki molekularnej z zastosowaniem Fluorescencyjnej Hybrydyzacji in situ (FISH), z użyciem wszystkich dostępnych rodzajów sond po spektralną analizę kariotypu (SKY) włącznie. Opracowywanie wyników odbywa się zgodnie z wytycznymi Międzynarodowego Systemu Nazewnictwa Chromosomów (ISCN 2013).
Zespół Pracowni stanowią specjaliści w dziedzinie laboratoryjnej genetyki medycznej co zapewnia wysoki poziom wykonywanych badań diagnostycznych na każdym etapie terapii, włączając przeszczepianie hematopoetycznych komórek macierzystych. Z uwagi na konieczność ciągłego rozwoju i doskonalenia metod diagnostycznych i terapeutycznych oraz stosowania nowych metod konieczne jest stałe utrzymywanie poziomu świadczonych usług i wprowadzanie nowej metodyki.
- pacjenci poddawani transplantacji komórek hematopoetycznych mają zapewniony stały (24h) dostęp do diagnostyki, wynik techniką FISH opracowywany jest w najkrótszym możliwym czasie (do 24h) bez konieczności transportu materiału
- pracownia posiada szeroki zakres sond stosowanych w technice FISH
- zespół pracowni posiada wieloletnie doświadczenie i rekomendacje Polskiego Towarzystwa Genetyki Człowieka
- Pracownia, od 2009 roku, jako jedyne Polskie laboratorium posiada certyfikaty międzynarodowej kontroli jakości badań cytogenetycznych w nowotworach hematopoetycznych CEQA
- Doświadczenie w oparciu o dużą liczbę wykonanych analiz dotychczas ponad 12 000
Pracownia Diagnostyki Molekularnej
Zespół:
- dr n. med. Sylwia Czekalska - Kierownik Pracowni, diagnosta laboratoryjny; specjalista laboratoryjnej genetyki medycznej
- mgr Martyna Bielaska - biolog
- mgr Kornelia Bukojemska-Kornelak - diagnosta laboratoryjny
- mgr Katarzyna Domino – biolog
- mgr Anna Dziubek - diagnosta laboratoryjny; specjalista laboratoryjnej diagnostyki medycznej, specjalista laboratoryjnej genetyki medycznej
- mgr Izabela Florek - diagnosta laboratoryjny
- mgr Paulina Gawęda - diagnosta laboratoryjny
- mgr Edyta Gródecka – sekretarka medyczna
- lek. Marek Karpiński - lekarz, specjalista genetyki klinicznej
- mgr Joanna Karzyńska - diagnosta laboratoryjny
- Magdalena Kurowska-Kluzek - st. technik analityki medycznej
- dr n. med. Dorota Link-Lenczowska - diagnosta laboratoryjny
- mgr Wiktoria Miśkowicz – diagnosta laboratoryjny
- mgr Anna Nogieć – diagnosta laboratoryjny
- mgr Nina Polańska - diagnosta laboratoryjny
- mgr Małgorzata Sado - diagnosta laboratoryjny, specjalista laboratoryjnej diagnostyki medycznej, specjalista laboratoryjnej genetyki medycznej
- dr n. med. Anastazja Stój – biolog
- mgr Aleksandra Świstak – biolog
- mgr Klaudia Kościelniak - diagnosta laboratoryjny
- mgr Karolina Soczówka - diagnosta laboratoryjny
Galeria zdjęć
Usługi medyczne
Zakład Diagnostyki Hematologicznej i Genetyki
Zasady przyjęć:
Pracownia Badań Hematologicznych
PRACOWNIA BADAŃ HEMATOLOGICZNYCH
- 12 400 36 76 - badania morfologii krwi, leukogramy
- 12 400 36 71 - badania układu krzepnięcia
PRACOWNIA BADAŃ HEMATOLOGICZNYCH - lista badań ZDHiG 11 KB - 24.03.2022 11:45 Pobierz
Dni i godziny wykonywania badań:
DNI I GODZINY WYKONYWANIA BADAŃ |
poniedziałek-piątek, godz. 7.30 - 15.05 |
CZAS OCZEKIWANIA NA WYNIK (LICZBA DNI) |
Minimalny czas oczekiwania: 1 dzień roboczy |
(*) Badanie wykonywane na potrzeby Kliniki Hematologii Szpitala Uniwersyteckiego w Krakowie
Wzór skierowania na badania do Pracowni Badań Hematologicznych Pobierz
Pracownia Cytometrii Przepływowej
PRACOWNIA CYTOMETRII PRZEPŁYWOWEJ - BADANIA WYKONYWANE W TRYBIE PLANOWYM
-
tel. 12 400 36 80, 12 400 36 81, 12 400 36 82
Materiał do badań:
- krew pełna żylna pobrana metodą podciśnieniową do probówek z EDTA-K
- szpik kostny pobrany (2-4 ml) do probówki z EDTA-K
- płyn mózgowo – rdzeniowy (5-8 ml / min.3 ml) aspiratu do probówek bez antykoagulantu (jeśli domieszka krwi przelać do probówki z EDTA-K)
- płyny z jam ciała (min.10m płynu, aspirat przelać do probówek bez antykoagulantu)
- popłuczyny oskrzelikowo-pęcherzykowe (min. 20 ml aspiratu przelać do jałowych probówek bez antykoagulantu)
- biopsja cienkoigłowa węzłów chłonnych (po zaaspirowaniu komórek nabrać do strzykawki 1 ml soli fizjologicznej i przelać do probówek z EDTA-K)
- każdy inny materiał w postaci zawiesiny komórkowej
UWAGA
Rodzaj materiału nie wpływa na koszt procedury.
Metoda analityczna : wszystkie badania wykonywane są metodą cytometrii przepływowej z użyciem monoklonalnych i poliklonalnych przeciwciał, na analizatorach (cytometrach przepływowych) FACSCanto II i FACSLyric
Wynik: w formie opisowej (ocena ilościowa i jakościowa populacji ocenianych komórek hematopoetycznych w badanym materiale plus komentarz).
Wzór skierowania na badania immunofenotypowe do Pracowni Cytometrii Przepływowej Pobierz
Pracownia Cytogenetyczna
PRACOWNIA CYTOGENETYCZNA - BADANIA WYKONYWANE W TRYBIE PLANOWYM
- Tel. 12 400 36 77, 12 400 36 78
L.p. |
Lista badań |
Jednostka chorobowa |
1 |
Analiza kariotypu komórek nowotworowych- metody cytogenetyki klasycznej, metoda prążków GTG |
Choroby nowotworowe układu hematopoetycznego |
2 |
Analiza kariotypu komórek nowotworowych – metody cytogenetyki molekularnej |
Choroby nowotworowe układu hematopoetycznego Wybór sondy zależny od rozpoznania i ujawnionych aberracji w badaniu metodami cytogenetyki klasycznej |
Sondy centromerowe: Chromosom 12 pary Chromosom 8 pary Chromosomy X I Yq |
||
Sond specyficzne: ATM (11q22.3) TP53/CEP17 Sonda delecyjna 13q14.3 Sonda delecyjna (20q) |
||
Sondy fuzyjne/translokacyjne: Dual Color Dual Fusion Translocation Probe IGH/BCL2 IGH/CCND1 RUNX1/RUNX1T1 PML/RARA BCR/ABL |
||
Sond typu split (break-apart): CBFB MLL EVI1 IGH MYC BCL6 (ABR) |
||
Sondy potrójnie znakowane: MDS 5q- (5q31;5q33)/hTERT95p15)TC MDS 7q-(7q22;7q36)/SE7TC |
||
Panel sond rokowniczych (CLL): ATM (11q22.3) 12alfa Sonda delecyjna 13q14.3 TP53/CEP17 |
Przewlekła Białaczka Limfocytowa |
|
Panel sond rokowniczych (Szpiczak plazmocytowy) : Panel podstawowy: TP53 IGH Panel uzupełniający: TP53 IGH FGFR3/IGH t(4;14) MAF/IGH t(14;16) 1q21/SRD 1p36 sonda delecyjna13q14 IGH/MAFB t(14;20) status poliploidii 5/9/15 |
Szpiczak Plazmocytowy Wybór sond dostosowany do indywidualnych wskazań lekarza kierującego |
|
3 |
Analiza kariotypu - metody cytogenetyki klasycznej, identyfikacja aberracji chromosomowych przy użyciu jednej (GTG) lub kilku metod prążkowych (GTG lub CBG lub Ag-NOR) |
Diagnostyka obejmująca: 1. genetyczne przyczyny: niepłodności i niepowodzeń rozrodu zaburzeń dojrzewania, różnicowania i determinacji płci wrodzonych wad rozwojowych 2. zespoły dysmorficzne |
4 |
Analiza kariotypu - metody cytogenetyki molekularnej |
|
Sonda Saethre-Chotzen/Williams-Beuren |
Zespół Williamsa |
Materiał :
PRÓBÓWKI do badań cytogenetycznych zawierają heparynę litową
Nakrętka wymaga dezynfekcji przed założeniem igły (pobieranie techniką podciśnieniową lub aspiracyjną)
Przygotowanie pacjentów nie jest konieczne
Po pobraniu materiał należy jak najszybciej dostarczyć do Pracowni Cytogenetycznej w temp. 4-24 o C
(nie zamrażać!)
Probówki opisać nazwiskiem i imieniem pacjenta zgodnie ze zleceniem.
Krew żylna:
Kariotyp konstytucyjny
- osoby dorosłe i dzieci w wieku 2-18 lat w objętości-3 ml,
- noworodki i dzieci w wieku do 2 lat-1ml.
Materiał należy opisać imieniem i nazwiskiem pacjenta i dołączyć skierowaniem
Nowotwory hematologiczne
krew żylna jest materiałem rekomendowanym dla
- Przewlekłej Białaczki Limfocytowej/Chłoniaka z Małych Limfocytów-B
- pozostałych jednostek chorobowych przebiegających bez zajęcia szpiku kostnego i obecnością komórek nowotworowych w krwi obwodowej.
UWAGA
Krew obwodowa może stanowić materiał do badania w ostrych białaczkach jeżeli aspiracja szpiku nie była możliwa z przyczyn technicznych
Szpik kostny:
Do badań cytogenetycznych należy dostarczyć ok. 2 ml szpiku z pierwszej aspiracji po nakłuciu lub po zmianie miejsca przez przemieszczenie igły.
Po wykonaniu aspiracji należy zdjąć igłę biopsyjną, odkręcić nakrętkę próbówki (nie odkładać na blat, chronić przed zainfekowaniem) przestrzyknąć aspirat do próbówki, zakręcić nakrętkę i dokładnie wymieszać przez kilkakrotne wstrząsanie w celu równomiernego zabezpieczenia antykoagulantem.
UWAGI
- MATERIAŁ PRZENOSIĆ DO PRÓBÓWKI BEZPOŚREDNIO PO POBRANIU, NIE ODKŁADAĆ NA STOLIKU ZABIEGOWYM PONIEWAŻ MATERIAŁ BEZ ANTYKOAGULANTU WYKRZEPIA.
- NIE ASPIROWAĆ WIĘKSZEJ OBJĘTOŚCI Z JEDNEGO MIEJSCA PONIEWAŻ POWODUJĘ TO ROZCIEŃCZENIE SZPIKU KOSTNEGO KRWIĄ OBWODOWĄ.
- W PRZYPADKU TRUDNOŚCI Z UZYSKANIEM ODPOWIEDNIEJ OBJĘTOŚCI ASPIRATU (WŁÓKNIENIE, NISKA KOMÓRKOWOŚĆ) NALEŻY DOSTARCZYĆ PRÓBKĘ W OBJETOŚCI UZYSKANEJ.
Przed wykonaniem aspiracji należy pobrać z pracowni próbówkę ze świeżo przygotowanym medium zawierającym podłoże RPMI-1640 z heparyną.Bioptat węzła chłonnego:
W zależności od techniki wykonywania biopsji:
- biopsja aspiracyjna - należy zdjąć igłę biopsyjną ze strzykawki, odkręcić nakrętkę próbówki (nie odkładać na blat, chronić przed zainfekowaniem) przestrzyknąć aspirat do próbówki, zakręcić nakrętkę i dokładnie wymieszać przez kilkakrotne wstrząsanie w celu równomiernego zabezpieczenia antykoagulantem.
- biopsja bez użycia strzykawki, igłę biopsyjna należy trzymać w ręce zabezpieczonej sterylną rękawiczką, końcówkę igły należy trzymać bezpośrednio nad próbówką. Po uzyskaniu komórek zakręcić nakrętkę próbówki i kilkakrotnie wstrząsnąć w celu równomiernego zabezpieczenia antykoagulantem.
UWAGA
PRZED WYKONANIEM BIOPSJI SKÓRĘ NALEŻY UMYĆ CHIRURGICZNIE I ZABEZPIECZYĆ CHUSTĄ. WSZYSTKIE CZYNNOŚCI WYKONYWAĆ Z ZACHOWANIEM ZASAD POSTĘPOWANIA ASEPTYCZNEGO.
Węzeł chłonny/śledziona pobrane chirurgicznie:
Pobrany w warunkach sali operacyjnej z zachowaniem zasad pełnej jałowości węzeł lub jego fragment/ fragment śledziony należy umieścić w sterylnym pojemniku do badania posiewu moczu, zakręcić i jak najszybciej dostarczyć do pracowni.
UWAGA
Materiał dostarczany jest w pojemniku suchym, nie wolno zalewać solą fizjologiczną, formaldehydem bądź innymi płynami służącymi do transportu do innych pracowni.
Dzielenie węzła/śledziony w celu wykonania kilku badań wymaga zachowania warunków sterylnych.
Płyny z jam ciała/ Płyn mózgowo-rdzeniowy:
Należy pobrać w typowy sposób z zachowaniem warunków sterylnych ok. 2 - 10 ml płynu.
Wynik: zgodnie z zapisem ISCN 2016 w formie opisowej obejmujący interpretację
Czas oczekiwania zależny od rozpoznania, test techniką FISH pilny, diagnostyczny do 3 dni roboczych
Uwagi do badań: brak zaleceń dla pacjentów
Skierowanie na badanie cytogenetyczne 278 KB - 05.10.2022 11:21 Pobierz
Pracownia Diagnostyki Molekularnej
PRACOWNIA DIAGNOSTYKI MOLEKULARNEJ - BADANIA WYKONYWANE W RAMACH DIAGNOSTYKI NIEHEMATOLOGICZNEJ
- Tel: 12 400 36 69, 12 400 36 70, 12 400 36 72
Usługi:
1 |
Odczyt sekwencji (sekwenator ABI3500) |
2 |
Analiza odczytu sekwencji uzyskanej metodą sekwencjonowania Sangera |
Diagnostyka genetyczna z zakresu endokrynologii:
1 |
Analiza sekwencji genu RET |
2 |
Analiza sekwencji genu MEN1 |
3 |
Analiza sekwencji genów SDHB/SDHD |
4 |
Analiza sekwencji genu VHL |
5 |
Ocena najczęstszych mutacji BRCA1/2 (11mutacji) |
6 |
Analiza sekwencji genu AIP |
7 |
CYP21A2 (Sekwencjonowanie + MLPA) |
8 |
Analiza sekwencji genu PROP1 |
9 |
Analiza sekwencji genu CHEK2 (eks. 4, 5, 12) |
10 |
Analiza sekwencji genu THRb |
11 |
Analiza sekwencji genu TSHR |
12 |
Ocena rodzinnej mutacji punktowej |
13 |
Analiza sekwencji genu MAX |
14 |
Analiza sekwencji genu KAL1 |
15 |
Analiza sekwencji genu CDKN1B |
16 |
Analiza sekwencji genu AIRE |
17 |
Analiza sekwencji genu FGFR1 |
18 |
Analiza sekwencji genu PTEN |
Diagnostyka genetyczna chorób rzadkich z zakresu neurologii
1 |
Analiza liczby kopi genu SMN1 i SMN2 |
2 |
Analiza sekwencji genów MT-ND1, MT-ND4 i MT-ND6 |
3 |
Analiza sekwencji genu ABCD1 |
4 |
Analiza sekwencji genu ACVR1 |
5 |
Analiza sekwencji genu ApoE |
6 |
Analiza sekwencji genu ARSA |
7 |
Analiza sekwencji genu ARX |
8 |
Analiza sekwencji genu ASPA (pozostałe eksony kodujące) |
9 |
Analiza sekwencji genu ATL1 |
10 |
Analiza sekwencji genu ATM (eksony 12, 42,43,50,54) |
11 |
Analiza sekwencji genu C19ORF12 |
12 |
Analiza sekwencji genu CAPN3 |
13 |
Analiza sekwencji genu CAV3 |
14 |
Analiza sekwencji genu CDKL5 |
15 |
Analiza sekwencji genu CHCHD10 |
16 |
Analiza sekwencji genu CSF1R |
17 |
Analiza sekwencji genu CYP27A1 |
18 |
Analiza sekwencji genu DES |
19 |
Analiza sekwencji genu DRD3 |
20 |
Analiza sekwencji genu EIF2B2 |
21 |
Analiza sekwencji genu EIF2B4 |
22 |
Analiza sekwencji genu EIF2B5 |
23 |
Analiza sekwencji genu FGFR3 (eksony 10 i 13) |
24 |
Analiza sekwencji genu FTL |
25 |
Analiza sekwencji genu GAA |
26 |
Analiza sekwencji genu GALC |
27 |
Analiza sekwencji genu GBA |
28 |
Analiza sekwencji genu GCH1 |
29 |
Analiza sekwencji genu GDAP1 |
30 |
Analiza sekwencji genu GFAP (eksony 1, 3, 4, 5, 6 i 8) |
31 |
Analiza sekwencji genu GJB1 |
32 |
Analiza sekwencji genu GLA |
33 |
Analiza sekwencji genu HFE |
34 |
Analiza sekwencji genu HINT1 |
35 |
Analiza sekwencji genu LRRK2 |
36 |
Analiza sekwencji genu MAPT (eksony 2, 11-15) oraz genu GRN (ekson 12) |
37 |
Analiza sekwencji genu MFN2 |
38 |
Analiza sekwencji genu MPZ |
39 |
Analiza sekwencji genu MT-TL1 |
40 |
Analiza sekwencji genu NEFL |
41 |
Analiza sekwencji genu NKX2-1 |
42 |
Analiza sekwencji genu NOTCH3 (eksony 12-22) |
43 |
Analiza sekwencji genu NOTCH3 (eksony 2-11) |
44 |
Analiza sekwencji genu NPC1 |
45 |
Analiza sekwencji genu NPC2 |
46 |
Analiza sekwencji genu NTRK1 |
47 |
Analiza sekwencji genu PANK2 |
48 |
Analiza sekwencji genu PARK2 |
49 |
Analiza sekwencji genu PINK1 |
50 |
Analiza sekwencji genu PMP22 |
51 |
Analiza sekwencji genu PNKD |
52 |
Analiza sekwencji genu POLG |
53 |
Analiza sekwencji genu PSEN1 oraz APP (eksony 16 i 17) |
54 |
Analiza sekwencji genu PSEN2 |
55 |
Analiza sekwencji genu REEP1 |
56 |
Analiza sekwencji genu SCN1A (eksony 1,6,9,10,11,13,15,16,21,25,26) |
57 |
Analiza sekwencji genu SCN4A (eksony 12, 13, 18, 24) i CACNA1S (eksony 11, 21, 30) |
58 |
Analiza sekwencji genu sekwencji genu ATP7B (wybrane eksony) |
59 |
Analiza sekwencji genu SETX (eksony 1-10) |
60 |
Analiza sekwencji genu SETX (eksony 11-26) |
61 |
Analiza sekwencji genu SGCE (eksony 3-7 i 9) |
62 |
Analiza sekwencji genu SHOX |
63 |
Analiza sekwencji genu SLC26A2 (eksony 1,2,3) |
64 |
Analiza sekwencji genu SLC2A1 |
65 |
Analiza sekwencji genu SMPD1 (eksony 1-6) |
66 |
Analiza sekwencji genu SNCA |
67 |
Analiza sekwencji genu SOD1 (wszystkie eksony kodujące) |
68 |
Analiza sekwencji genu SPAST |
69 |
Analiza sekwencji genu SPG11 (eksony 1-20) |
70 |
Analiza sekwencji genu SPG11 (eksony 20-40) |
71 |
Analiza sekwencji genu SPG7 |
72 |
Analiza sekwencji genu SPTLC1 (eksony 5,6,10,11) |
73 |
Analiza sekwencji genu THAP1 |
74 |
Analiza sekwencji genu TPP1 (pozostałe eksony kodujące) |
75 |
Analiza sekwencji genu TTPA |
76 |
Analiza sekwencji genu TTR |
77 |
Analiza sekwencji genu WASHC5 (eksony 1-13) |
78 |
Analiza sekwencji genu WASHC5 (eksony 13-26) |
79 |
Potwierdzenie obecności wariantu wykrytego metodą NGS |
80 |
Wykrywanie delecji i duplikacji w genach LMNB1, PLP1, NOTCH3 |
81 |
Wykrywanie delecji i duplikacji w genach PMP22, MPZ i GJB1 |
82 |
Wykrywanie delecji i duplikacji w genach SETX, APTX i FXN |
83 |
Wykrywanie delecji i duplikacji w genach SPAST i ATL1 |
84 |
Wykrywanie delecji i duplikacji w genach związanych z chorobą Alzheimera |
85 |
Wykrywanie delecji i duplikacji w genach związanych z chorobą Parkinsona |
86 |
Wykrywanie delecji i duplikacji w genie GALC |
87 |
Wykrywanie delecji i duplikacji w genie SPG11 |
88 |
Wykrywanie wariantu c.907_909delGAG w genie TOR1A |
89 |
Wykrywanie wariantu p.Arg208* oraz c.509-1G>C w genie TPP1 |
90 |
Wykrywanie wariantu p.Asp437del genu COMP |
91 |
Wykrywanie wariantu pAla305Glu w genie ASPA |
Materiał :
- Krew pełna żylna pobrana jałowo metodą podciśnieniową do probówek z EDTA-K ( jak na morfologię),
- Szpik kostny (2-3 ml) pobrany jałowo do probówki z EDTA-K lub 2-4 ml aspiratu szpiku kostnego pobrać na 1 ml 10% EDTA dodanego wcześniej do strzykawki i przelać do jałowej probówki bez antykoagulantu
- Inne tkanki
Metoda analityczna: wszystkie badania wykonywane są metodami biologii molekularnej (izolacja DNA, PCR, RQ-PCR, GeneScanning, sekwencjonowanie, MLPA)
Wynik: w formie opisowej obejmujący
- Obecność danej zmiany do 30 dni
Uwagi do badań: brak zaleceń dla pacjentów
Skierownie na badanie zaburzeń genetycznch 351 KB - 02.06.2020 11:42 Pobierz
PRACOWNIA DIAGNOSTYKI MOLEKULARNEJ - BADANIA WYKONYWANE W RAMACH DIAGNOSTYKI HEMATOLOGICZNEJ
- Tel: 12 400 36 69
L.p. |
Lista badań |
Jednostka chorobowa |
1 |
BCR-ABL diagn. (multipleks) |
CML |
2 |
BCR-ABL kontr. (nested) |
|
3 |
BCR-ABL ilościowo (RQ-PCR) |
|
4 |
Mutacje domeny ABL |
|
5 |
MDR1 |
|
6 |
m-BCR-ABL diagn. (multipleks) |
ALL |
7 |
m-BCR-ABL kontr. (nested) |
|
8 |
m-BCR-ABL ilościowo (RQ-PCR) |
|
9 |
SIL-TAL |
|
10 |
CALM-AF10 |
|
11 |
MLL-AF4 |
|
12 |
TEL-AML1 |
|
13 |
E2A-PBX |
|
14 |
JAK2 mut. V617F jakościowo |
MPN |
15 |
JAK2 mut. V617F ilościowo (RQ-PCR) |
|
16 |
CALR eks. 9 |
|
17 |
MPL |
|
18 |
ASXL1 |
|
19 |
PRV1 |
|
20 |
FIP1L1-PDGFRa |
CEL |
21 |
ETV6-PDGFRb |
CMML |
22 |
Flt3-ITD |
AML |
23 |
Flt3 D835 |
|
24 |
MLL-PTD |
|
25 |
CEBPa |
|
26 |
EVI1 |
|
27 |
WT1 |
|
28 |
RUNX-RUNX1 (AML-ETO) |
|
29 |
PML-RARa diagn. |
|
30 |
PML-RARa kontr. |
|
31 |
CBFB-MYH11 diagn. |
|
32 |
CBFB-MYH11 kontr. |
|
33 |
Rearanżacje IgH-VDJ |
chłoniaki |
34 |
Klonalność TCRG, TCRB, IgH-VDJ |
|
35 |
Mutacje TP53 |
|
36 |
Chimeryzm hematopoetyczny badanie kontrolne WBC |
Chimeryzm hematopoetyczny po allogenicznej transplantacji |
37 |
Chimeryzm hematopoetyczny badanie kontrolne w subpopulacji limf.T |
|
38 |
KIT D816V |
Mastocytoza/AML |
39 |
MYD88 L265P |
Makroglobulinemia |
40 |
Zabezpieczenie materiału ze szpiku |
Wszystkie typy schorzeń |
41 |
Zabezpieczenie materiału z krwi |
Materiał :
- Krew pełna żylna pobrana jałowo metodą podciśnieniową do probówek z EDTA-K ( jak na morfologię),
- Szpik kostny (2-3 ml) pobrany jałowo do probówki z EDTA-K lub 2-4 ml aspiratu szpiku kostnego pobrać na 1 ml 10% EDTA dodanego wcześniej do strzykawki i przelać do jałowej probówki bez antykoagulantu
- Inne tkanki
Metoda analityczna : wszystkie badania wykonywane są metodami biologii molekularnej (izolacja RNA, izolacja DNA, odwrotna transkrypcja, PCR, RQ-PCR, GeneScanning, sekwencjonowanie)
Wynik: w formie opisowej obejmujący
- Ekspresję genów fuzyjnych w formie jakościwoej (oebecny / nieobecny) bądź ilościowej (ile). Czas oczekiwania na wynik ok. 14 dni.
- Wystepowanie danej aberracji genetycznej. Czas oczekiwania na wynik ok. 14 dni.
- Obecność danej mutacji do 30 dni
Uwagi do badań: brak zaleceń dla pacjentów
Procedury:
Pracownia Badań Hematologicznych
Pracownia Badań Hematologicznych i Genetyki Zakład Diagnostyki Hematologicznej i Genetyki
Szpital Uniwersytecki w Krakowie
ul. Jakubowskiego 2, 30-688 Kraków
tel. 12 400 36 71, 12 400 36 76
fax 12 400 36 84
Procedura pobierania, transportu i przechowywania materiału do badań Pobierz
Materiał do analizy:
Materiał do analizy:
Badanie w kierunku |
Sposób pobrania materiału |
ocena przeciwciał p/płytkowych krążących |
Krew żylna (skrzep)lub surowica |
morfologia krwi (CBC+DIFF) |
Krew żylna (EDTA-K) |
płytki krwi cytrynian |
Krew żylna (cytrynian) |
izolacja komórek jednojądrzastych krwi obwodowej |
Krew żylna (heparyna) |
ocena cytologiczna szpiku kostnego - mielogram |
Aspirat szpiku kostnego |
FAG |
Krew włośniczkowa |
*Transport w temperaturze 4-24⁰C – NIE ZAMRAŻAĆ. Materiał powinien dotrzeć do laboratorium do 24h od chwili pobrania.
DNI I GODZINY WYKONYWANIA BADAŃ |
poniedziałek-piątek, godz. 7.30 - 15.05 |
|
CZAS OCZEKIWANIA NA WYNIK (LICZBA DNI) |
Minimalny czas oczekiwania: (bez uwzględnienia przesyłki wyniku w formie listowej) |
|
morfologia krwi (CBC+DIFF), morfologia krwi (CBC+DIFF+RET) leukogram-ocena mikroskopowa erytrogram-ocena mikroskopowa płytki krwi cytrynian |
do 4 godzin |
|
ocena cytologiczna szpiku kostnego-mielogram badanie cytochemiczne szpiku(PAS,POX) badanie hemoglobiny płodowej HbF badanie cytochemiczne krwi obwodowej (PAS,POX,FK) |
do 3 dni |
|
sideroblasty FAG |
do 14 dni |
|
ocena przeciwciał p/płytkowych krążących |
do 21dni |
|
TRYB PRZEKAZYWANIA WYNIKÓW BADAŃ |
Wykonawca przekazuje wyniki badań do siedziby zamawiającego pocztą lub/i na prośbę zamawiającego faxem |
Pracownia Cytometrii Przepływowej
Pracownia Cytometrii Przepływowej Zakład Diagnostyki Hematologicznej i Genetyki Szpital Uniwersytecki w Krakowie
ul. Jakubowskiego 2, 30-688 Kraków
tel. 12 400 36 80, 12 400 36 81, 12 400 36 82
fax 12 400 36 84
Procedura pobierania, transportu i przechowywania materiałów do badań Pobierz
L.p. |
Rodzaj materiału
|
Cel badania |
Sposób pobrania materiału |
I |
Krew obwodowa |
Ocena subpopulacji limfocytów Monitorowanie terapii w AIDS Monitorowanie terapii w boreliozie Ocena komórek CD34+ przed separacją Podejrzenie CLL, PLL-B, PLL-T, NK- LGL, T- LGL, MF, SS , SMZL (zawsze w momencie diagnozy) Ocena NNH
Podejrzenie ALL, AML i pozostałe NHL (w przypadku braku możliwości pobrania szpiku kostnego i pod warunkiem zajęcia kom. nowotworowymi krwi obwodowej)
|
krew obwodową pobrać metodą podciśnieniową do probówki z EDTA-K ( jak na morfologię ) transport do 6h ( w sytuacjach wyjątkowych do 20h , z wykluczeniem badań aktywacji limfocytów i badań ilościowych ) ( ocena klonów NNH na leukocytach max do 48h , ocena klonów NNH na erytrocytach max do 7 dni) |
II |
Szpik kostny |
Diagnoza AML, ALL, NHL Monitorowanie terapii w AML, ALL, NHL MRD w AML, ALL, NHL
|
2-5 ml aspiratu szpiku kostnego pobranego do strzykawki aspiracyjnej przestrzyknąć do probówki z EDTA-K i dobrze wymieszać lub 2-5 ml aspiratu szpiku kostnego pobrać na 1 ml 10% EDTA dodanego wcześniej do strzykawki – dobrze wymieszać i przelać do jałowej probówki bez antykoagulantu transport do 6h ( w sytuacjach wyjątkowych do 12h ) |
III |
Koncentrat komórek po separacji |
Ocena kom. CD34+ w koncentracie komórek po separacji przed auto PBSCT lub allo PBSCT
|
0,5 ml koncentratu komórek z ACD po separacji (ACD dodawany automatycznie w czasie procedury), przelać do probówki bez antykoagulantu transport do 3h (od pobrania z worka zestawu separacyjnego) |
IV |
Płyny z jam ciała
|
Ocena płynów ( np.; otrzewnowego, opłucnowego ) na obecność komórek nowotworowych u pacjentów z rozpoznaniem NHL, ALL, AML |
10-50 ml (min 10ml) płynu z jamy ciała, aspirat przelać do probówek bez antykoagulantu transport do 6h |
V |
Płyn mózgowo - rdzeniowy |
Diagnoza i monitorowanie NHL pierwotnych ośrodkowego układu nerwowego Ocena zajęcia OUN przez komórki nowotworowe w innych NHL, ALL, AML
|
5-8 ml (min.3 ml) płynu mózgowo-rdzeniowego, aspirat przelać do probówki z EDTA-K – delikatnie wymieszać transport optymalnie do 0,5h – maksymalnie do 1h
lub
5-8 ml (min.3 ml) płynu mózgowo-rdzeniowego, aspirat przelać do probówki z podłożem transportowym do PMR (TransfiX Sample Storage Tubes for PMR) transport do 24h |
VI |
Popłuczyny oskrzelikowo- pęcherzykowe – BAL |
Ocena immunofenotypową limfocytów i ich stanu aktywacji, Różnicowanie NHL
|
minimum 20 ml aspiratu przelać do jałowych probówek bez antykoagulantu
do 4h |
VII |
Ciało szkliste oka |
Diagnostyka różnicowa stanów odczynowych vs NHL |
Nierozcieńczony aspirat ciała szklistego przelać do jałowych probówek bez antykoagulantu transport optymalnie do 0,5h – maksymalnie do 1h
|
VIII |
Biopsja cienkoigłowa węzłów chłonnych |
Diagnoza i monitorowanie NHL Różnicowanie lifodenopatii nowotworowej i odczynowej |
aspirat (10-12 nakłuć węzła chłonnego) pobrać na 1 ml soli fizjologicznej z dodatkiem 50 j. biol. heparyny– dobrze wymieszać , i przelać do jałowych probówek bez antykoagulantu lub po zaaspirowaniu komórek nabrać do strzykawki 1 ml soli fizjologicznej, i przelać do probówek z EDTA-K – dobrze wymieszać transport do 4h |
Przygotowanie pacjentów nie jest konieczne.
Probówki opisać nazwiskiem i imieniem pacjenta, oraz nr PESEL, zgodnie ze zleceniem.
Transport w temperaturze 4-24⁰C – NIE ZAMRAŻAĆ!
DNI I GODZINY PRZYJMOWANIA MATERIAŁU DO BADAŃ |
poniedziałek-piątek, godz. 7.30 – 13.00 |
CZAS OCZEKIWANIA NA WYNIK (LICZBA DNI) |
MAKSYMALNY czas oczekiwania: 5 dni roboczych (podany czas nie uwzględnienia przesyłki wyniku w formie listowej)
|
TRYB PRZEKAZYWANIA WYNIKÓW BADAŃ |
Wykonawca przekazuje wyniki badań do siedziby zamawiającego |
Pracownia Cytogenetyczna
Pracownia Cytogenetyczna Zakład Diagnostyki Hematologicznej i Genetyki
Szpital Uniwersytecki w Krakowie
- ul. Jakubowskiego 2, 30-688 Kraków
- Budynek D, IIp.
- Tel. 12 400 36 77, 12 400 36 78
- Fax. 12 400 36 87
- e-mail: Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.
PROCEDURA OKREŚLAJĄCA TRYB I ZASADY POBIERANIA, PRZECHOWYWANIA, TRANSPORTU I PRZYJMOWANIA MATERIAŁU DO BADAŃ
Materiał do analizy cytogenetycznej:
Badanie w kierunku | Sposób pobrania materiału |
Badanie kariotypu komórek szpiku | 2-3 ml szpiku kostnego pobranego jałowo na heparynę litową jako pierwsza porcja po nakłuciu |
Transport w temperaturze 4-24⁰C – NIE ZAMRAŻAĆ. Materiał powinien dotrzeć do laboratorium do 24h od chwili pobrania.
DNI I GODZINY WYKONYWANIA BADAŃ | poniedziałek-piątek, godz. 7.30 - 15.05 |
CZAS OCZEKIWANIA NA WYNIK (LICZBA DNI) | Minimalny czas oczekiwania: 3 dni robocze (bez uwzględnienia przesyłki wyniku w formie listowej) |
TRYB PRZEKAZYWANIA WYNIKÓW BADAŃ | Wykonawca przekazuje wyniki badań do siedziby zamawiającego pocztą lub/i na prośbę zamawiającego faxem |
Pracownia Diagnostyki Molekularnej
Pracownia Diagnostyki Molekularnej* Zakład Diagnostyki Hematologicznej
Pracownia Diagnostyki Molekularnej:
- ul. Jakubowskiego 2, 30-688 Kraków
- Budynek D, IIp.
- Tel. 12 400 36 69, 12 400 36 74
- Fax 12 400 36 85
- e-mail: Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.
- e-mail: Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.
PROCEDURA OKREŚLAJĄCA TRYB I ZASADY POBIERANIA, PRZECHOWYWANIA, TRANSPORTU I PRZYJMOWANIA MATERIAŁU DO BADAŃ
Materiał do analizy molekularnej:
Badanie w kierunku |
Jednostka chorobowa |
Sposób pobrania materiału |
BCR-ABL (diagnoza) BCR-ABL (kontrola) BCR-ABL (RQ-PCR (ilościowo))* Mutacje domeny ABL |
CML |
10-20 ml krwi obwodowej pobranej jałowo na EDTA (9:1) |
FIP-PDGFRalfa |
CEL |
10-20 ml krwi obwodowej pobranej jałowo na EDTA (9:1) |
ETV6-PDGRFbeta |
CMML |
10-20 ml krwi obwodowej pobranej jałowo na EDTA (9:1) |
JAK2 V617F CALR eks.9 ASXL1 |
MPN |
10-20 ml krwi obwodowej pobranej jałowo na EDTA (9:1) |
PRV1 |
PV |
10-20 ml krwi obwodowej pobranej jałowo na EDTA (9:1) |
Flt3-ITD NPM1 MLL-PTD EVI-1 WT-1 AML-ETO PML-RARalfa CBFbeta-MYH11 |
AML |
2-3 ml szpiku kostnego pobranego jałowo na EDTA 10-20 ml krwi obwodowej pobranej jałowo na EDTA (9:1) |
BCR-ABL (diagnoza) BCR-ABL (kontrola) BCR-ABL (RQ-PCR (ilościowo)) Mutacje domeny ABL TEL-AML1 CALM-AF10 E2A-PBX SIL-TAL |
ALL |
2-3 ml szpiku kostnego pobranego jałowo na EDTA lub 10-20 ml krwi obwodowej pobranej jałowo na EDTA (9:1) |
KIT D816V |
Mastozytoza/AML |
10-20 ml krwi obwodowej pobranej jałowo na EDTA (9:1) |
IGH-VDJ TCRG TP-53
|
Chłoniaki |
10-20 ml krwi obwodowej pobranej jałowo na EDTA (9:1) lub |
Mutacje BRCA1 |
Rak piersi |
10-20 ml krwi obwodowej pobranej jałowo na EDTA (9:1) |
KIR |
Diagnostyka niepłodności żeńskiej |
10-20 ml krwi obwodowej pobranej jałowo na EDTA (9:1) lub wymaz z wewnętrznej części policzka (UWAGA: nie umieszczać w podłożu transportowym) |
MYD88 L265P |
Szpiczak |
2-3 ml szpiku kostnego pobranego jałowo na EDTA |
Chimeryzm hematopoetyczny po allogenicznej transplantacji |
2-3 ml szpiku kostnego pobranego jałowo na EDTA 10-20 ml krwi obwodowej pobranej jałowo na EDTA (9:1) |
Transport w temperaturze pokojowej (w upalne dni prosimy o transport materiału z wkładami chłodzącymi owiniętymi ligniną) – NIE ZAMRAŻAĆ. Materiał powinien dotrzeć do laboratorium do 24h od chwili pobrania.
DNI I GODZINY WYKONYWANIA BADAŃ |
poniedziałek-piątek, godz. 7.30 - 15.05 |
CZAS OCZEKIWANIA NA WYNIK (LICZBA DNI) |
Minimalny czas oczekiwania: 10 dni roboczych (bez uwzględnienia przesyłki wyniku w formie listowej) |
TRYB PRZEKAZYWANIA WYNIKÓW BADAŃ |
Wykonawca przekazuje wyniki badań do siedziby zamawiającego pocztą lub/i na prośbę zamawiającego faxem |
*Laboratorum referencyjne w zakresie ilościowej oceny genu BCR-ABL w skali międzynarodowej (IS – International Scale) w ramach konsorcjum European LeukemiaNet i EUTOS for CML.
Procedura pobieranie przechowywanie PDM DIAGNOSTYKA HEMATOLOGICZNA Pobierz
Zespół
Zakład Diagnostyki Hematologicznej i Genetyki
Nasz personel
Kierownik Zakładu
Magdalena Zawada
dr n. med.
Kierownik Pracowni Cytometrii Przepływowej
Agnieszka Balana-Nowak
dr n. biol.
Kierownik Pracowni Badań Hematologicznych
Katarzyna Bulińska
Kierownik Pracowni Diagnostyki Molekularnej
Sylwia Czekalska
dr n. med.
Kierownik Pracowni Cytogenetycznej
Małgorzata Jakóbczyk
Lekarze medycyny
Marek Karpiński
Biolodzy
Martyna Bielaska
Anastazja Stój
dr n. med.
Aleksandra Świstak
Diagności laboratoryjni
Magdalena Zawada
dr n. med.
Agnieszka Balana-Nowak
dr n. biol.
Aleksandra Biedroń
Roksana Bryczek
Kornelia Bukojemska-Kornelak
Katarzyna Bulińska
Magdalena Błądek
Sylwia Czekalska
dr n. med.
Anna Dyrka
dr n. med.
Anna Dziubek
Izabela Florek
Katarzyna Folta-Sąsiadek
Paulina Gawęda
Teresa Iwaniec
dr n. med.
Małgorzata Jakóbczyk
Katarzyna Kamska
Joanna Karzyńska
Jolanta Komenda
Dorota Link-Lenczowska
dr n. med.
Wiktoria Miśkowicz
Anna Nogieć
Nina Polańska
Barbara Rusnaczenko
Małgorzata Sado
Karolina Soczówka
Anita Starzec
Edyta Zdziłowska
Sekretarka medyczna
Edyta Gródecka
Technicy analityki medycznej
Magdalena Kurowska-Kluzek
Kontakt
Zakład Diagnostyki Hematologicznej i Genetyki
Kierownik Zakładu:
- tel.: 12 400 36 54
- fax: 12 400 36 84
- e-mail: Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.
Sekretariat:
- tel.: 12 400 36 51
- fax: 12 400 36 84
Pracownia Badań Hematologicznych:
- 12 400 36 76 - badania morfologii krwi, leukogramy
- 12 400 36 71 - badania układu krzepnięcia
- e-mail: Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.
- e-mail: Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.
Pracownia Cytometrii Przepływowej:
- tel.: 12 400 36 80, 12 400 36 81, 12 400 36 82
- email: Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.
Pracownia Cytogenetyczna:
- tel.: 12 400 36 77, 12 400 36 78
- fax: 12 400 36 87
- e-mail: Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.
Pracownia Diagnostyki Molekularnej:
- tel.: 12 400 36 69, 12 400 36 74
- fax: 12 400 36 85
- e-mail: Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.
- e-mail: Ten adres pocztowy jest chroniony przed spamowaniem. Aby go zobaczyć, konieczne jest włączenie w przeglądarce obsługi JavaScript.
Wzory zleceń
Zakład Diagnostyki Hematologicznej i Genetyki
Skierowanie na badanie do Pracowni Badań Hematologicznych ZDHiG Pobierz
Skierowanie na badanie immunofenotypowe do Pracowni Cytometrii Przepływowej ZDHiG Pobierz
Skierowanie na badanie do Pracowni Cytogenetycznej ZDHiG Pobierz
Skierowanie na badanie zaburzeń molekularnych do Pracowni Diagnostyki Molekularnej Pobierz
Skierowanie na badanie genetyczne do Pracowni Diagnostyki Molekularnej Pobierz
Zakład Diagnostyki Hematologicznej i Genetyki
Magdalena Zawada dr n. med.
Zakład
ul. Jakubowskiego 2, Budynek D - piętro 2
Nowa Siedziba SU Kraków - Prokocim
Jakubowskiego 2, 30-688 Kraków
Dotychczasowa Siedziba Szpitala Uniwersyteckiego
ul. Kopernika 36, 31-501 Kraków